Шпаргалка по "Ветеринарии"

Автор работы: Пользователь скрыл имя, 06 Февраля 2014 в 13:28, шпаргалка

Краткое описание

АСКАРИДОЗ СВИНЕЙ.
АНАПЛАЗМОЗ КРС
Варрооз пчел. Современные средства и меры борьбы с ним

Вложенные файлы: 10 файлов

ОЭВД ГОС2013.docx

— 53.70 Кб (Просмотреть документ, Скачать файл)

ПАРАЗИТ печать шпора.docx

— 84.55 Кб (Просмотреть документ, Скачать файл)

Паразитология ГОС 2013.docx

— 227.11 Кб (Просмотреть документ, Скачать файл)

Шпора по эпизоотологии.doc

— 384.00 Кб (Просмотреть документ, Скачать файл)

шпоры паразит.doc

— 157.00 Кб (Скачать файл)
 

 

 

4.

5.


 

6. Учение академика Скрябина о девастации

Девастация – метод  наступательной активной профилактики, направленной на истребление, уничтожение  возбудителя на всех стадиях его  жизненного цикла всеми доступными способами механического, химического, физического и биологического воздействия.

Презервация – комплекс оборонных, защитных и профилактических мероприятий, направленных на предотвращение заражения человека и животных возбудителями  паразитарных болезней.

Тотальная девастация –  полное уничтожение гельминтов у определенных видов животных на ограниченной территории.

Парциальная девастация предусматривает снижение заболеваемости и падежа животных от паразитарных болезней.

7.

8.

9.Объем паразитологии

I.Зоопаразитология

1)Животных

а)чел-ка-мед. зоопаразитология

-мед протозоология

-мед гельминтология

-мед арахноэнтомология

б)дом ж-х-вет. зоопаразитология

-вет протозоология

-вет гельминтология

-вет арахноэнтомология

в)ост ж-х – зоопаразитология ж-х в шир смысле

2)Раст-й

а)с/х раст - агрономическая зоопаразитология

- агрономическая протозоология

- агрономическая гельминтология

- агрономическая арахноэнтомология

б)лесных пород - лесная зоопаразитология

- лесная протозоология

- лесная гельминтология

- лесная арахноэнтомология

в)ост раст – зоопаразитология раст в шир смысле

II.Фитопаразитология

1)Животных

а)чел-ка-мед. фитопаразитология

-мед бактериология

-мед микология

б)дом ж-х-вет. фитопаразитология

-вет бактериология

-вет микология

в)ост ж-х – фитопаразитология  ж-х в шир смысле

2)Раст-й

а)с/х раст - агрономическая фитопаразитология

- агрономическая бактериология

- агрономическая микология

- агрономическая фитопаразитология

б)лесных пород - лесная фитопаразитология

- лесная бактериология

- лесная микология 

- лесная фитопаразитология

в)ост раст – фитопаразитология раст в шир смысле

10. Методы гельминтолярвоскопии

Ларвоскопия (от лат. larva - личинка, греч. skopeo - смотрю) –сов-ть приемов обр-ки и иссл-я проб мат-ла с целью выявл-я личинок гельм-в и устан-я по ним возб-ля.

Гельминтоларвоскопию  прим для диагностики диктиокаулеза и протостронгилидозов жвачных, стронгилятозов. и стронгилоидоза у с/х ж-х.

1. Гельминтоларвоскопия при диктиокаулезе

В тепл время года быстро развив-ся личинки стронгилят пищ  тракта,что затруд иссл-е мат-ла. Поэт пробы фекалий после взятия сразу следует направлять в лабор-ю, чтобы иссл-ть до выхода из них личинок стронгилят.

Для дифф-ции диктиокаулюсов предложена методика окраски. К осадку в пробирке или на стекло доб-т 1-2 кап 0,1% вод р-ра метилен синего. Осадок встрях-т и ч/з 20-30 с. Микроскоп-т. Личинки диктиокаулюсов овец окраш-ся в ярко-сиреневый, а личинки диктиокаулюсов телят в светло-сиреневый цвет. Личинки др нематод ост-ся неокраш-ми, частицы корма окраш-ся в зелен цвет, а жид-ть - в голубой.

Личинки диктиокаулюсов овец расп в самых поверх-х слоях фекальн шариков. Поэт разрушать их стр-ру при закладке проб не следует. Личинки протостронгилюсов, мюллерий, напротив, в шариках фекалий овец распред-ся равномерно, на пов-ти их нах-ся незначит часть. Поэт при иссл-и на указанные гельминтозы предвар-но шарики фекалий следует разрушать. При этом эфф-ть иссл-й увел-ся в 10 раз.

2. Метод Вайда

Эта методика очень проста и применяется для диагностики  диктиокаулезов жвачных, протостронгилеза, мюллериоза и цистокаулеза овец и  коз.

На предметное или часовое стекло кладут несколько шариков свежевыделеиных фекалий овец и коз и добавляют небольшое количество воды (температура около 40°С). Если шарики помещают на предметное сткло,  то  достаточно  несколько капель   воды.   Через  40  мин.   шарики

удаляют, оставшуюся жидкость на стекле микроскопируют на наличие  личинок нематод.

4.3. Метод Беумана-Орлова

Эта методика наиболее широко распространена и несложна по технике  исполнения.. Для исследования по этому  методу нужно иметь металлические или пластмассовые воронки (с верхним диаметром 10 см), маленькие гельминтологические пробирки (5-8 см высотой и 0,8-1 см диаметром), резиновые трубки (диаметром 0,7-0,8 см), штатив для воронок и зажимы.

Метод основан на следующем: личинки в теплой влажной среде активно выбираются из фекалий и, попав в воду, падают на дно.

Фекалии (5-10 г) кладут на металлическое сито или заворачивают в марлю и помещают в воронку. На нижний конец воронки надевают резиновую трубку длиной 10 см с зажимом, в свободный конец трубки вставляют пробирку. Собранный в таком виде аппарат Бермана ставят в штатив и заполняют теплой водой (40°С).

Аппарат с пробами  от овец и коз оставляют при  комнатной температуре на 3-6 часов, крупного рогатого скота и лошадей  на 12 часов. За это время личинки  нематод выползают из пробы в жидкость и опускаются до места перекрытия трубки зажимом. После истечения срока зажимы открывают и наполняют пробирки водой, в которой могут находиться личинки нематод. Пробирки ставят в штатив на 20 мин. для осаждения личинок. Затем воду из пробирок сливают до осадка. Осадок встряхивают на предметные стекла и микроскопируют. Личинки нематод подвижны и они легко обнаруживаются.

4.4. Метод Шильникоеа

Автор еще более упростил методику Бермана-Орлова. В этой методике используются обыкновенные медицинские градуированные стаканчики (емкостью 30 мл), имеющие форму усеченного конуса и сферическое дно. Выпуклость дна направлена кверху. Пробы фекалий завертывают в марлевые салфетки, раскладывают по стаканчикам и заливают теплой водой. Через 8-10 часов пробы осторожно вынимают, а жидкость отстаивают 10-15 мин Затем стаканчики медленно наклоняют, сливают воду до появления мути. Дают отстояться осадку жидкости 5-10 мин- После этого стаканчик медленно наклоняют и из него глазной пипеткой отсасывают верхний прозрачный слой воды до тех пор, пока в пипетку не начнет всасываться осадок на дне. При аккуратном отсасывании на дне стаканчика остается 0,5-1 мл жидкости. Этот осадок каплями наносят на предметное стекло и микроскопируют.

Эта методика заслуживает внимание практиков. Она проста и удобна для выполнения в любых условиях.

4.5, Культивирование личинок гельминтов

Его проводят с целью  диагностики гельммнтозов вообще и  дифференциальной диагностики в  частности. Культивирование заключается  в создании для яиц гельминтов, находящихся в фекалиях, благоприятных условий, чтобы личинки выросли до инвазионной стадии. По их морфологии определяют вил возбудителей.

У домашних и диких  травоядных в пищеварительном факте  часто паразитируют нема! оды из подотряда стронгилят Выделяющиеся с фекалиями яйца этих нематод трудно различимы. Поэтому методами овоскопии практически ставят только общий диагноз. Дифференциальный диагноз возможен по развившимся личинкам

4.5.1. Метод культивирования  личинок

Порцию свежих фекалий  животного в количестве 10-30 г помещают в стакан, закрывают куском стекла и оставляют в. термостате при 25-27°С на семь дней или при комнатной температуре на 10-12 дней. По мере подсыхания пробу фекалий слегка увлажняют водой. По истечении указанных сроков пробу фекалий исследуют по методу Бермана-Орлова или Шильникова.

Освобожденный от фекалий стакан заполняют водой, выдерживают 15-20 мин., затем верхний слой осторожно сливают, а осадок исследуют в часовом стекле под микроскопом.

 


 

 

11. Комбинированные методы

Эти методы основаны на комбинации совершенно противоположных приемов  обработки проб фекалий, то есть седиментации и флотации. Поэтому их называют седиментационногфлотационными или, наоборот, флотационно-седиментационными  методами.

Несмотря на усложнение приемов обработки проб ли методы являются более эффективными, на исследования расходуется значительно меньше флотационной жидкости, следовательно, они более экономичны

Благодаря комбинации противоположных  приемов достигается обогащение осадка и поверхностной пленки яйцами гельминтов и удаление излишних посторонних частиц взвеси, которые мешают микросколированию. Применение двойного центрифугирования взвеси -вначале с водой, а затем с флотационным раствором способствует в первом случае быстрому осаждению яиц в результате воздействия центростремительной силы, а во втором - всплыванию их за счет воздействия центробежной силы.

Впервые комбинированный  метод гельминтоовоскопии был предложен  американским паразитологом Дарлингом (1911). В последующем на основе этого метода были разработаны различные методики и модификации.

3.3.1   Метод Дарлинга

• Пробу фекалий весом 3-5 г помещают в химическим стаканчик  и тщательно размешивают с 18-20 мл воды, процеживают через сито в другой стаканчик, полученную жидкость переливают в центрифужную пробирку и центрифугируют в течение 1-2 мин. при 3000 об/мин. Затем надосадочную жидкость сливают, а к осадку добавляют флотационную жидкость, состояшую из равных частей глицерина и насыщенного раствора хлорида натрия. Плотность такой жидкости равна 1,205 при 18°С Содержимое взбалтывают и вновь центрифугируют в том же режиме при этом яйца всплывают, их снимают проволочной петлей с поверхностной пленки и микроскопируют на предметном стекле.

Этот метод применяют  для диагностики аскаридатозов и других нематодозов у животных.

3.3.2. Метод Шербовича

В качестве флотационных жидкостей автором предложены три  раствора из насыщенных солей: нитрата  натрия, сульфата магния и тиосульфата  натрия.

Пробу фекалий величиной  с грецкий орех кладут в стакан, добавляют 40-60 мл воды и тщательно размешивают до появления равномерной взвеси. При постоянном помешивании взвесь процеживают через металлическое сито или марлю в чистый стакан. После 5 минутного отстаивания надосадачную жидкость сливают. На дне оставляют такое количество взвеси, которое бы вместилось в центрифужную пробирку и центрифугируют 1-2 мин. при 3000 об/мин., после чего всю жидкость до осадка сливают, а к осадку добавляют флотационный раствор нужной плотности. Осадок взбалтывают до получения взвеси и снова центрифугируют 1-2 мин. при 1500 об/мин. После этого петлей снимают пленку с жидкости, переносят на предметное стекло и микроскопируют.

При диагностике метастронгилеза  свиней применяют насыщенный раствор  сульфата магния (0,92 кг MgSO4 на 1 л воды, р=1,28). При этом выявляются возбудители и других нематодозов, в частности трихсмефалеза, аскаридатозов, стронгилятозов пищеварительного тракта различных животных.

Насыщенные растворы тиосульфата натрия (1,75 кг Na2S2O3 на 1 л воды, р=1,40) и нитрата натрия (1 кг NaNO3 на 1 л воды, р=1,38) рекомендуются для диагностики макракантаринхоза свиней, а также всех перечисленных гельминтозов разных животных. С любым из растворов методику можно применять для диагностики тениидозов собак и для диагностики спируратозов (тетрамероза, стрептокароза, эхинуроза) и полиморфоза уток.

Недостатком этого метола со всеми тремя флотационными  жидкостями является то, что с его  помощью не удается диагностировать  тяжелые яйца трематод, в частности  описторхоза, фасциолеза и парамфистоматоза.

3.3.3. Метод Котельникова и Вареничева

Яйца описторхисов очень  мелкие и тяжелые (удельный вес 1,38-1,46). В связи с этим обычные флотационные растворы непригодны. В качестве флотационной жидкости в этой методике применяют  насыщенный раствор хлорида цинка (2 кг ZnCl2 на ] л воды) с плотностью 1,82. Техника проведения этого метода аналогична как при методе Щербовича.

Метод Котел ьникова  и Вареничева предложен для диагностики  описторхоза плотоядных, но он пригоден и для гельминтоовоскопии нематод, цестод и других трематод у животных.

Недостатком этого метода является то, что из-за большого удельного  веса флотационной жидкости (1,82), вместе с яйцами гельминтов поднимаются  на поверхность после центрифугирования  и не переваренные частицы корма, что затрудняет просмотр материала и в конечном итоге влияет на диагностическую эффективность этой методики.

Разработано также много  других модификаций комбинированного метода гельминтоовоскопии. В качестве флотационной жидкости предложены насыщенные растворы из следующих' солей: нитрата аммония-1,5 кг NH4NO3 на 1л воды, р=1,30 (метод Котельникова и Хренова), углекислого калия - 0,6 кг K2CO3 на 1 л воды, р=1,41 (метод Вольфа), сульфата цинка - 0,45 кг ZnSO4 на 1 л воды, р=1,39 (метод Вишняускаса).

другие малоэффектгаигы при трематодозах. По этой причине они также не нашли широкого применения на практике.

3.3.4. Модифицированный метод (Латыпов Д.Г.. Лутфуллин MXJ

Горшкова Г.Г.)

На кафедре паразитологии  КГАВМ разработана новая модификация  комбинированного метода гельминтоовосколии. Техника проведения ее аналогична методу Щербовича. В качестве флотационной жидкости применяется смесь из трех ингредиентов — насыщенных солей хлорида цинка, хлорида натрия и сахара.

Вначале готовят отдельно базовые насыщенные растворы из указанных солей: 1 - насыщенный раствор хлорида цинка (2 кг ZnCl2 на 1 л воды, рз=1,82), 2 - насыщенный раствор хлорида натрия (0,42 кг NaCl на 1 л воды, р=1,19), 3 - сахара (1,67 кг С12Н22О11 на 1 л воды, р=1,28). Для получения комбинированной флотационной жидкости смешивают эти растворы в соотношении 2:1:1. Плотность такого раствора составляет 1,53.

Модифицированный комбинированный  гельминтоовоскопический метод  КГАВМ является универсальным и  позволяет диагностировать одновременно яйца нематод, цестод и трематод. Диагностическая эффективность метода высокая. По результативности он превосходит все вышеперечисленные методы гельминтоовоскопии животных. Поверхностная пленка после центрифугирования с флотационной жидкостью остается чистой, нанесенные капли не подвергаются кристаллизации в течение 3-х часов.

3.3.5 Экспресс-метод групповой гельминтоовоскоггии животных (Латыпов Д.Г., Горшкова Г.Г.)

С увеличением объема диагностических исследований, существующие лабораторные методы распознавания  гельминтозных заболеваний, основанные на ручном труде не удовлетворяют практические запросы. Производительность труда гельминтоовоскопических исследований в течение рабочего дня не превышает 40-50 анализов (в среднем 10 мин. на 1 пробу).

Вместе с тем, из-за низкой диагностической эффективности гельминтоовоскопических методов при трематодозах (фасциолез, дикроцеллоз, парамфистоматоз и др.) не представляется возможным индивидуальная дегельминтизация животных, т.к. большинство инвазированных остаются не выявленными. По этой причине, при обнаружении в гуртах инвазированных животных в практических условиях рекомендуется применять,групповую дегельминтизацию.

Исходя из вышеизложенного, экспресс-метод групповой гелъминтоовоскопии жмиоп-пих, как пешюляюишй в минимальном  отроке времени определять паразитологическую ситуацию в стадах или отарах заслуживает особое внимание практиков. Эта методика удобна также при контроле диагностической эффективности дегельминтизации, особенно когда у животных встречаются ассоциативные формы инвазии.

С каждой пробы фекалий (от 2-х до 100 проб) с помощью пинцета кладут примерно 1 г фекалий в стакан или банку емкостью 0,5 л. Затем взятые пробы заливают небольшим количеством воды и тщательно размешивают пинцетом или палочкой, после при постоянном помешивании добавляют воду порциями до объема 0,5 л. Взвесь фильтруют через металлическое сито с размером ячеек 0,5x0,5 в другой стакан-или банку емкостью 0,75 л. Оставшийся на сите осадок промывают

200-250 мл воды. После  взвесь снова фильтруют через  сито с размером ячеек 0,25x0,25 в чистый стакан или банку емкостью 1 л. Оставшийся на сите осадок повторно промывают 200-250 мл воды. Двухкратно отфильтрованную взвесь отстаивают в течение 10 мин., надосадочную жидкость осторожно сливают, оставляя над осадком лишь небольшое ее количество. Таким образом, осадок промывают 3-5 раз обычным сливом воды. После последнего промывания примерно 50 мл осадка наливают в центрифужные пробирки и центрифугируют 2 мин. при 1500 об/мин. Затем надосадочную жидкость сливают, а к осадку добавляют флотационную смесь из трех ингредиентов (из насыщенных солей хлорида цинка, хлорида натрия и сахара в соотношении 2:1:1). Техника изготовления комбинированной флотационной жидкости аналогично как в модифицированном методе (3.3.4.). Осадок взбалтывают до получения взвеси и снова центрифугируют в том же режиме. После центрифугирования пипеткой осторожно доливают флотационный раствор в центрифужные пробирки, чтобы получился выпуклый мениск, и сверху покрывают его предметным стеклом на 5 мин. Затем стекло быстро отнимают, чтобы жидкость не стекала, повертывают соприкасающей стороной кверху и микроскопируют

12. . Флотационные методы

Все методы флотации (от англ. Jlolalhion - всплывание) основаны на единой физической закономерности, обеспечивающей всплытие яиц гельминтов в насыщенных, растворах солей. Для этого рекомендуются растворы различных солей, но предпочтительнее-дешевых и повсеместно доступных.

Отдельные методы флотации называются по именам авторон, впервые  предложивших ту или иную соль для  приготовления флотационной жидкости.

3.2.1. Метод Фюллёборна

Для этой методики- нужен  насыщенный раствор поваренной соли, который готовят путем кипячения 400-420 г соли на 1 л воды.

Пробу фекалий весом 3-5 г помещают в стакан, заливают небольшим  количеством флотационной жидкости, тщательно размешивают, затем добавляют 50-100 мл этого раствора и процеживают через металлическое сито или марлю в один спой в сухой, чистый стакан. Взвесь отстаивают 40-60 мин., затем прикосновением петли снимают поверхностную пленку, переносят ее на предметное стекло для микроскопирования.

Этот метод в отечественной  лабораторной практике может применяться  для диагностики аскаридоза, стронгилятозов и стронгилоидоза свиней, неоаскаридоза, стронгилятозсж стронгилоидозов, мониезиоза,. тизанизиоза, авите;и!иноза жвачных, параскаридоза, стронгклятозов кишечника лошадей

Плотность насыщенного  раствора поваренной соли невысокая -1,18-1,20. Тогда как удельный вес яиц  аскариса равен 1,10-1,14: а у неошюдотворенных яиц - 1,26, а трихоцефалюса - 1,16-1,22. Поэтому насыщенный раствор поваренной соли способен флотировать только масть яиц аскарид и трихоцефалюсов, по этой причине диагностическая эффективность данной методики невысокая. Кроме того, раствор на предметном стекле быстро кристаллизуется.

3.2.2. Метод Котельникона-Хренова с аммиачной селитрой

Технология этого метода такая же, как и метода Фюллёборна, но в качестве флотационной жидкости применяется нитрат аммония (техническая  гранулированная аммиачная селитра) используемый для удобрений. При  приготовлении флотационной жидкости и на 1 л кипящей воды растворяют 1,5 кг селитры. Плотность раствора - 1,32. Поверхностную пленку можно микроскоиировать через 10 мин.

Данная методика обладает высокой диагностической эффективностью. Кроме того, гранулированная аммиачная селитра, применяемая для флотационного раствора - общедоступная дешевая соль и производится в огромном количестве как минеральное удобрение.

В лабораторной практике эта методика широко применяется  для выявления яиц аскаридоза, трихоцефалеза, эзофагостомоза и метастронгилеза свиней, неоаскарндоза, стронгилятозов пищеварительного тракта, трихоцефалеза, авителлиноза жвачных, параскаридоза и стронгилятозов лошадей, токсокароза и токсаскаридоза собак, кошек, песцов, лисиц и других плотоядных, стронгилоидоза животных разных видов, аскаридиоза и гетеракидоза кур.

Недостатком этого метода является то, что флотационная жидкость из аммиачной селитры не способна поднять тяжелые яйца трематод (фасциол, парамфистом, описторхисов и др.), т.к. удельный вес этих яиц больше чем 1,3 и раствор быстро кристаллизуется.

3.2.3. Метод Котельникова-Хренова с нитратом свинца

Техника проведения этого  метода аналогична методу Фюллёборна. В качестве флотационной жидкости при  этом используется насыщенный раствор  нитрата свинца из расчета 0,65 кг на 1 л воды. Плотность этой жидкости достигает 1,5. Применение такого флотационного раствора дает возможность диагностировать широкий круг возбудителей гельминтозов и с его помощью легко выявляются и тяжелые яйла фасциол (удельный вес 1,31-1,35), парамфистоматат (1,33-1,38), дикроцелиумов (1,3) и еще быстрее яйца с меньшим удельным весом, аскаридат, стронгилят, метастронгшпосов, трихоцефалят, стронгилоидесов, аноплоцефаяят (мониезий),   тениат,   скребней  (макраканторинхусов),   а также капсулы тизаниезий.

Недостатком данной методики является дороговизна нитрата свинца. Вместе с тем, при работе данным препаратом петли покрываются белым   налетом, (нитрат   свинца   входит   в   химическую   реакцию   с металлами),    яйца    трематод    сильно    деформируются,    что создает определенные трудности при исследовании. Кроме того, используемый препарат соль тяжелого металла—свинца, который является высокоядовитым    веществом,    что    создает    опасность    для   здоровья исследователей и окружающих, отработанные растворы данного препарата запрещено  сливать  в  канализационные  стоки.   По  совокупности  этих причин, указанная методика не нзлта широкого применения в практике.

Кроме того, в качестве флотационных жидкостей авторами были предложены насыщенные растворы из следующих солей: нитрата натрия -1 кг препарата на I л воды, р - 1,38 (метод Калантаряна), тиосульфата натрия - 1,75 кг препарата на 1 л воды, р - 1,40 (метод Болховитинова), карбоната калия - 0,6 кг на 1 л воды, р - 1,41 (метод Вольфа). Однако все эти методы по тем или иным причинам также не нашли широкого применения в практике.

13. Методы гельмннтоовоскопин

Гельминтоовоскопия (от латинского ovum - яйцо, греческого skopeo- смотрю) объединяет группу методов исследования, с помощью которых выявляют яйца возбудителей гельминтозов.

Предложено много методов  овоскопии. Но не все они заслуживают  практического внимания: одни сложны по технике выполнения, при исследовании другими требуется значительное время, третьи малоэффективны. В данной работе мы приведем только те методы, которые заслуживают практического внимания.

Удельный вес яиц  тяжелее обычной воды, вследствие этого яйца гельминтов, как более  тяжелые частички вымываются из фекалий  водой и оседают на дно сосуда с различной скоростью, в зависимости от удельного веса, Быстрее всего оседают яйца более крупного размера.""

В растворах же солей  высокого удельного веса яйца гельминтов наоборот всплывают (явление флотации) в верхний слой и концентрируются ~в-н«м...

На использовании этих ..физических закономерностей основала технология всех современных методов гельмннтоовоскогаш, которые подразделяются на три группы:

а) Методы осаждения (седиментации) яиц гельминтов;

б) Методы флотации яиц гельминтов;

в) Комбинированные   методы    (осаждения    и    флотации)    яиц гельминтов.

 

3.1. Методы осаждения (седиментации) основаны на принципе осаждения взвешенных в жидкости яиц гельминтов, промывки осадка и исследования его. Эти методы применяются в основном для диагностики тех гельминтозов, возбудители которых выделяют яйца с высоким удельным весом (фасциолез, дикроцелиоз, парамфистоматоз, описторхоз и др.). Методики осаждения менее эффективны и более трудоемки, чем флотации. Это связано со сложностью отыскания яиц гельминтов в осадке взвеси.

3.1.1 .Метод последовательных смывов

Пробу фекалий весом 3-5 г кладут в стакан, вливают небольшое  количество воды и размешивают палочкой или пинцетом до получения жидкой кашицеобразной массы, затем добавляют  воду порциями до объема 50 мл при постоянном размешивании; После взвесь процеживают через металлическое сито или марлю в другой стакан, в нем отстаивают в течение 5-10 мин. Затем верхний слой жидкости над осадком сливают, а к осадку добавляют новую порцию воды и вновь отстаивают в течение .5-10-мин. Описанная процедура повторяется до тех-пор, пока вода не ■ станет прозрачной. Ее в последний раз сливают, а осадок (около 5 мл) разливают на предметные стекла или стекла большего размера (12x19) и микроскопирутот.

Эта методика широко применяется  в ветеринарных лабораториях для диагностики фасциолеза, дикроцелиоза, парамфистоматоза, эуриггрематоза и других гельминтозов жвачных. Вместе с тем," она трудоемка и по диагностической эффективности значительно уступает специальным флотационным и комбинированным методам гельминтоовоскопил.

3.1.2. Метод Горшкова.

Этот метод предложен  ял я диагностики драйшеоза и  габромематоза лошадей. Основан  на принципе осаждения и концентрации яиц 150-30° г фекалий помещают на металлическом сите или марле в большую воронку с верхним диаметром 15-20 см. Предварительно ка нижний конец воронки надевают резиновую трубку длиной 10-15 см с зажимом на конце. Воро;ку укрепляют в штативе. Фекалии разрыхляют, заливают доверху теплой водой (38-39°С) и выдерэкивают 4-24 часа. Затем зажим осторожно открывают, и жидкость выпускают в центрифужную пробирку и центрифугируют при 1500 об/мин, в течение 3-х мин. Верхний слой жидкости сливают, а осадок наносят на предметное стекло и микроскопируют.

3.1.3. Метод соскоба с перианальных складок

Эту методику применяют  для диагностики оксиуроза лошадей и пассалуроза кроликов. Из деревянной палочки или щепочки делают лопаточки (можно и спички), смачивают смесью глицерина с водой (1:1) и делают соскоб с перианальных складок с внутренней стороны хвоста в области промежности. Соскоб переносят на предметное стекло с указанной смесью, накрывают покровным егеклом и исследуют под микроскопом.

14

15.


 

 

 

17.

18.

19.Типы строения личинок цестод

1. Цистицерк (cysticercus)-пузырч обр-е, заполн ж-тью и окр наруж соед-тк капсулой. Внутри пузыря им-ся 1 сколекс с хоботком, присосками и хитин крючьями. Размеры и форма разл в завис от вида цестоды, возр-та и лок-и личинки в орг-ме промеж хозяина.Обычно обит у млекопит.Пузырь заполн ж-тью, в кот не 1 а много сколексов – ценур (coenurus)

2.Эхинококк (echinococcus) – в виде однокамер пузыря слож стр-я, наполн ж-тью.Внутр герминативная об-ка может прод-ть выводковые капсулы с одноврем форм-ем в них зародыш сколексов и вторич(дочерн)пузырей.В орг-ме ПХ приним разл морф модификации. Быв у млекопит.

3. Альвеококк (alveococcus)-конгламерат мелк, неправ формы пузырьков, в кот м.б. видны зародыш сколексы в виде мелк точек.

4. Цистецеркоид (cysticercoid)-микроскоп лярвоциста им-т расшир перед част с инвагинир сколексом и зад в виде хвост придатка – церкомера, на кот нах-ся эмбрион крючочки.Развив в орг-ме беспозв ПХ.

5. Стробилоцерк (Strobilocercus) – хор выраж вооруж круп крючьями сколекс с отходящей от него длин ложночленистой стробилой, заканч-ся на зад конце небольш пузырьком, наполн ж-тью.Обыч у грызунов.

6. Тетратиридий (tetratiridium)-ввернутый наподобие пальца перчатки невооруж сколекс с 4 присосками и отн-но длин хвостовым придатком без хвост пузырька.Обит в грызунах, хищн млекопит.

7. Процеркоид (procercoid)-личин стадия лентецов, тело удлин, на перед конце есть углубление (первич ботрии) и на зад – шарообр придаток с эмбр крючьями. Лок-ся у ПХ.

8. Плероцеркоид (plerocercoid)-личин стадия лентецов, достиг 1м дл, на перед конце тела кот расп ботрии. Локк-ся в ДопХ.

20. ТЕНИИДОЗЫ СОБАК

Тениидозы собак вызываются многочисленными представителями  цепней сем. Taeniidae, паразитирующими в тонком отделе кишечника различных хищных млекопитающих. Из тениидозов собак особенно широко распространены тениозы, мультицептозы и эхинококкоз; альвеококкоз встречается сравнительно редко, и до последнего времени его диагностировали как эхинококкоз. Патогенная роль остальных тениид в комплексе тениидозных инвазий совершенно не изучена. Редко у собак отмечают тениидозы, возбудителями которых являются личиночные стадии цестод: ларвальный эхинококкоз (Echinococcus unilocularis) и цистицеркоз целлюлозный (Cysticercus celiulosae). Тениидозы у собак часто протекают субклинически, однако в ряде случаев животные переболевают тяжело, иногда даже с летальным исходом.

Симптомы болезни зависят от вида возбудителя, интенсивности инвазии, а также от состояния организма животного: возраста, упитанности, условий содержания, кормления и т. д. Обычно у собак отмечают расстройство   деятельности   пищеварительного   тракта,   коликообразные явления, острое катаральное состояние кишечника переходит в хроническое, поносы чередуются с запорами. Аппетит извращен, значительно понижен, или наоборот, животное становится очень прожорливым, но продолжает терять в весе.

Особенно интенсивно развиваются симптомы при тениидозах у щенят. А. М. Петров отмечал, что  большинство щенят становятся крайне беспокойными, без причины воют, часто меняют свое ложе, мечутся, кусают животных. Иногда бывают судороги. Затем симптомы могут исчезнуть, и некоторое время никаких отклонений от нормы у щенят не наблюдают. Слизистые оболочки анемичны, при сильной инвазии возможен зуд в области ануса, при этом собака елозит по земле и трется о разные предметы. Шерсть взъерошена, появляются истечения из глаз, наступает быстрая утомляемость. В дальнейшем развиваются угнетение и прогрессирующее исхудание. Из тениидозов собак наиболее тяжело протекает эхи-нококкоз. При интенсивном заражении им у молодых собак отмечают острый энтерит со смертельным исходом.

Диагноз. Зрелые проглоттиды, наполненные яйцами, периодически выделяются с экскрементами собак, зараженных тениидозами. Иногда членики разрушаются в кишечнике, и тогда во внешнюю среду выходят онкосферы. Тенииды легко можно определить по отдельным гермафродитным или зрелым членикам и дифференцировать их от остальных цестод собак. Однако диагноз этот будет групповой — на тениидозы вообще. Для точного видового диагноза необходимо иметь целую стробилу со сколексом (диагноз на эхинококкоз и альвеококкоз можно поставить по отдельным изолированным членикам).

При гельминтоскопии  используют свежевыделенные экскременты.

Для   дифференциальной   диагностики   некоторых   яиц   и   личинок гельминтов В. Г. Эвранова  (1962)  предложила метод люминесцентной | микроскопии. Обработанные флюорохромами яйца и личинки гельминтов J рассматривают под микроскопом во время облучения объекта ультрафиолетовыми лучами или сине-фиолетовыми лучами видимого спектра. По окраске и интенсивности свечения удается в течение нескольких минут определить жизнеспособность яиц и личинок гельминтов, а также их дифференцировать. Наиболее надежный метод прижизненной диагностики имагинальных   цестодозов   собак — диагностическая   дегельминтизация бромистоводородным ареколином.

При манипуляциях с фекалиями  собак необходимо соблюдать меры предосторожности.

Лечение:бромистоводород ареколин 0,004 г/кг 1 раз после 12-14час голод диеты.Фенасал 0,1-0,2г/кг, Филиксан 0,2-0,4г/кг 24 часов голод диета. Аминоакрихин 2 раза ч/з 10 дн 0,2 г/кг.


 

 

21.

22.

23.

24.

25.


 

 

26.Аноплоцефалидоз  лошадей

Сем-во: Anoplocephalidae

Подотряд: Anoplocephalata

Половозрелые стадии: Anoplocephala magna (тощая, и подвздошная кишки);

Anoplocephala perfoliata (слепая и ободочная кишки);

Paranoplocephala mamillana (тонкий кишечник).

ДХ: лошади, ослы, мулы.

ПХ: орибатидные почвенные клещи.

Лечение: фенасал, феналидон, ликвофен.

27.

28. Дрепанидотениоз  гусей

Сем-во: Hymenolipididae

Подотряд: Hymenolipidata

Возб-ли: Drepanidotaenia lanceolata-массив цестода светло-желт или бел цв, дл 23см.На сколексе 4 присоски и 8 крючьев. Шир членика значит превыш длину.В герм членике 3 сем-ка расп по горизонт линии.Зрел членик заним матка, заполн больш кол-вом яиц.

Drepanidotaenia prziwalscii-дл и узк лента до 17см в дл, сероват цв,очень неж стр-я.Хоботок хор развит и вооруж 10 крючьями.Стробилы обыч свернуты в клубок.

ДХ: гусята, реже утята, молодняк многих диких водоплавающих и болотных птиц.

Лок-я половозр стадии: тонкий отдел кишечника.

ПХ цистицеркоида: рачки-циклопы, диаптомусы.

Биология: яйца с пометом во внеш среду>веслонос рачки>к-к выход онкосферы>пол-ть тела>11-12дн>цистецеркоид>12-25дн стан-ся инвазион>к-к птиц>15-20дн половозр

Клиника:гусята-угнетение, профуз понос,исхудание,растр-во корд дв-й,шаткость походки,запрокид гол  назад,маятникообр покач-е головой,нерв припадки,параличи.взросл-понос,истощение.

Диагноз:клиника,эпизоотология,гельминтоовоскопия, вскрытие.

Лечение: фенасал 0,3 г/кг после 16-18часов голод-я, битионол 0,6г/кг, филиксан 0,45г/кг, альбендазол, фенапэг, ликвофен.

Проф-ка: изолир выращ-я  мол-ка на благопол водоемах, кот необх  ежегод менять ост-я их своб на 1-2 года. Нельзя доп-ть скученность птиц.Лучше  выращ на суше. Проф дегельм-я маточн поголовья 2 раза в год:осенью и весной.Преимагинальная дегельм-я мол-ка при выпасе на неблагопол водоемах ч/з 12-14дн после выхода на воду.повтор ч/з 2 нед

29.

30.


 

 

31.

32.

33. Неоаскаридоз  телят

Сем-во: Anisakidae

Подотряд: Ascaridata

Возб-ль: Neoascaris vitulorum круп нематоды желт-бел цв самцы дл 11-15 см, самки 14-30см. Рот окр-н шир с вырезкой посредине перед края губами, отд-ми от тела перетяжкой.Расшир пишевода в месте перехода его в к-к.27пар преанал и 7пар постанал сосочков. Спикулы равные вентр, изогн.Яйца круглые, ячеист об-ка

ДХ: телята, буйволята и зебу.

Лок-я: тонкий отдел кишечника, реже в сычуге.

Биология:яйца во внеш ср при t28-30оС развив до инваз стадии(12-15дн), 15-18оС(более месяца), 32оС и выше гибнут.>к-кДХ выход личинки>гепато-пульмонал путь миграции>к-к половозр. Срок развития от личин до половозр – 43дн. В орг-ме живут 3-4мес.

Клиника: нач-ся ч/з 1-2 нед.Угнетение,сниж апп-та,запор или панос, тимпания к-ка.Тимпания сразу после приема молока при этом запах ацетона, эфира или хлороформа изо рта.фекалии темного цв с примесью крови.При выс инвазии непроход-ть к-ка.Повыш Т,затруд учащ Д,частое мочеисп.Судороги, растр-ва корд-и, параличи зада.

Диагноз: иссл фекалий  методом Фюллеборна,Щербовича.Вскрытие тонк отд к-ка.

Лечение: соли пиперазина 0,5г/кг после 12 часов голод диеты, нилверм, глауберова соль (сернокислый натрий) 0,4г/кг 10%водн р-ри др.

Проф-ка:Стельн коров  содерж отд от телят. Телят до 4-5 мес  изолир от более старших.В неблагопол с месячн возр дегельм-т.Для пастьбы коров исп пастб-ща на кот в теч 1 года не выпасали телят до 5-мес.

 

34.

35.


 

 

36.

 

37.

38.

39. Гемонхоз  овец и коз

Сем-во: Trichostrongylidae

Подотряд: Strongylata

Возб-ли: Haemonchus contortus

Haemonchus placei (у КРС). Волосовидное красно-ржавого цвета нематода. Кишечник паразита обвит половыми трубками, передний конец тела притуплен снабжен небольшой ротовой полостью на дорсальной стороне которой хитиновый зуб. В области передней четверти пищевода располагаются крупные шейные сосочки. Самец 18-23мм. Хвостовой конец с мощной половой бурсой. Боковые лопасти бурсы длинные. Средняя лопасть маленькая. Спикулы равные темно-желто-коричневые 0,3-0,5 мм. Рулек в форме челнока. Самка 25-35 мм, вульва открывается в задней трети тела, прикрыта языковидным надвульварным клапаном. Яйца овальные 0,085х0,04мм.

ДХ: овцы и козы более старшего возраста, КРС, северные олени и другие виды диких жвачных животных.

Лок-я: сычуг, реже тонкий отдел кишечника.

Клиника: Энзоотическое сезонное (весеннее-летнее) заболевание ягнят позднее-осеннего окота и реже годовиков и овцематок тонкорунных пород. Проявляется истощением, профузным поносом, анемией, атрофическим воспалением сычуга и наличием в нем возбудителя сем. Trichostrongilidae. Также козы, КРС.

Биология: без промежуточного хозяина, яйца с фекалиями >> через сутки личинка I стадии>> 2 суток питаются навозной жижей >> анабиоз( линяют)>> II стадия не питаются 1 сутки>> анабиоз покрывается двойной кутиколой>> III стадия – инвазионные >мигрируют в почву и на траву, обильные дожди смывают личинок в водоемы, лужи>> заглатывают овцы >в сычуге сбрасывают чехлик в толщу сычуга зарываются и ч-з 2-3 недели половозрелые…

Лечение: фенотиазин 0,5 г/кг. Слабительное нельзя! Мебендазол 0,01-0,02 г/кг. Убой не ранее 14 дней после дегельминтизации. Нафтамон 0,3 г/кг однократно 10% эмульсию. Нилверм.

Рекомендуется овцам  левамизол, мебенвет, при их отсутствии - 1%-ный раствор сульфата меди (как  при мониезиозе).

Нематодироз овец

Род: Nematodirus

Сем-во: Trichostrongylidae

Подотряд: Strongylata

Возб-ли: Nematodirus spathiger;

Nematodirus filicollis.

ДХ: козы, КРС, реже верблюды, олени и другие дикие жвачные.

Лок-я: тонкий отдел кишечника.

Лечение: фенотиазин, нафтамон в форме 10%-ной эмульсии, нилверм. Овцам рекомендуется назначать левамизол, мебендазол и мебенвет и др.

40.


 

 

41.

42.

 

43.

44.

45.


 

 

46.

47.

48.

49. Сетариозы животных

Род: Setaria

Сем-во: Setariidae

Подотряд: Filariata

Возб-ли: Setaria marschalli (параз-т у МРС и КРС);

Setaria digitata (параз-т у МРС);

Setaria equina (параз-т у лошадей);

Setaria  labiato-papillosa  (параз-т  у  КРС);

Setaria amurensis (паразитирует у КРС).

На гол конце выраж  перикубальное кольцо,разд-е вырезками  на 2 выступа и на 2 полукруг возвышения.У  самца 2 неравные спикулы,на хвост конце-2 латер сосочка.У самки вульва расп около гол конца

ДХ: лошади, КРС и МРС, буйволы, яки, зебу и др.

Лок-я:брюш,реже груд пол-ть,к-к,печень,поджел ж-за и диафрагма,пол-ть мошонки у быков, в ГМ и СМ у МРС.

Лич-ки – микросетарии в осн цирк-т в крови,иногда их обнар-т в глазах.

ПХ: комары.

Биология:В орг-ме комаров микросетарии развив до инвазион стадии в теч 16-24дн.Ж-е зараж-ся при нападении на них комаров,в хоботке кот им-ся инваз-е лич-ки.Сетарии достиг половозр стадии в теч 6 мес.

Клиника:бессимптомно

Диагноз:при жизни-на осн обнар-я в крови личинок методом Куликова,иссл-т кожу по методу Гнединой.

Лечение: 1%-ный раствор ивомека. При сетариозе галз-хирургич.

50.

шпоры по бактериям.docx

— 119.34 Кб (Просмотреть документ, Скачать файл)

шпоры по ГОСам-оригинал.doc

— 1.15 Мб (Просмотреть документ, Скачать файл)

Эпизоотология ГОС 2013.docx

— 239.82 Кб (Просмотреть документ, Скачать файл)

Информация о работе Шпаргалка по "Ветеринарии"