Современные данные об этиологии и патогенезе заболевания копытец у животных

 

Продолжение таблицы №5

в том числе

Оплата	Корма	Содержание основных средств	Услуги вспомогательного производства	Прямые производственные затраты	Общехозяйственные общепроизводственные расходы	Отнесено затрат на		Себестоимость молока, руб.
						Молоко	Приплод
13	14	15	16	17	18	19	20	21
186,6	786,0	181,9	466,1	164,9	152,8	1444,7	193,8	440,91
455	768	153	349	162	226	1902	211	513

 

Таблица № 6

Показатели биохимических исследований крови

№ п/п	каротин мг %	фосфор мг %	кальций мг %	общий белок г %	резервная щёлочность об %
1	0,207	6,8	13,7	6,0	48,1
2	0,161	7,1	13,9	6,0	44,8
3	0,184	7,1	14,2	5,9	53,7
4	0,184	8,0	14,2	6,2	53,5
5	0,161	7.3	14,1	6,1	53,7
6	0,138	6,9	13,8	5,4	53,7
7	0,207	6,8	13,7	6,0	44,8
8	0,207	6,4	14,6	6,8	53,7
9	0,261	6,6	14,1	6,8	44,8
10	0,207	7,3	14,0	5,0	49,3
11	0,205	7,1	13.9	6,3	46,0
12	0,163	8,0	13,7	71	52,5
13	0,182	8,3	14,0	5,4	52,5
14	0,163	6,6	13,2	6,9	52,5
15	0,140	7,3	13.5	5,9	52,5
16	0,205	7,4	13,4	6,3	46.8
17	0,209	7,1	13,5	6,7	51,6
18	0,259	8,0	13,4	6,7	51,6
19	0,213	7,5	14,1	6,9	53,7
20	0,183	7,7	14,0	6,4	52,5
средняя норма	0,150	7,1	13,5	7,0	52,1

 

Таблица №7

Схема проводимых плановых ветеринарно-санитарных мероприятий в хозяйстве ЗАО «Донец». Механическая очистка и дезинфекция

Мероприятия, проводимые за год	Кратность и сроки
1. Ректальное исследование	2 раза в год
2. Исследование на стельность	2 раза в год
3. Исследование на эндометриты	2 раза в год
4. Исследование на маститы	ежемесячно
5. Исследование на гельминты   6 исследование на туберкулез	за месяц до туберкулинизации 2 раза в год, в весенний и осенний периоды 2 раза в год
7. исследование крови  на: Лейкоз бруцеллёз	1 раз в год 1 раз в год
8. проводятся прививки: сибирская язва	1 раз в год
9. лечебно-профилактические  мероприятия: дегельминтизация дератизация	2 раза в год 2 раза в год

 

Схемы лечения распространённых болезней крупного рогатого скота в ЗАО «Донец»

Схема лечения маститов.

Для лечения клинически выраженных острых или подострых серозных или серозно-катаральных маститов, а также скрыто протекающих маститов применяют внутривыменное введение различных антибиотиков.

Для этого в поражённую долю через сосковый канал с помощью стерильных молочного катетера, резинового шланга и шприца Жане без поршня вводят 50 тыс. ед. натриевой соли пенициллина и 50 тыс. ед. стрептомицина в 50 мл 0,5%-ного тёплого раствора новокаина или физиологического раствора поваренной соли по 2 раза в день.

Хороший терапевтический эффект при острых серозных и катаральных маститах оказывает короткая новокаиновая блокада нервов вымени по Логвинову.

Можно также применять внутривыменное введение парного молока из здоровых долей вымени этой же или другой коровы.

Лечение осложнённых маститов (гнойных, фибринозных, геморрагических и др.) наряду с внутривыменным введением антибиотиков применяют и их внутримышечное введение (3-4 раза в день).

Схема лечения метритов.

Для удаления эскудата полость матки орошают 1%-ным раствором хлористого натрия, 2%-ным соле-содовым раствором и другими веществами. При дифтеритическом и гангренозном метрите орошение матки противопоказано. Для повышения тонуса матки рекомендуется применять массаж её через прямую кишку в течении 5-10 мин. При пере- и параметритах, некротическом и гангренозном метритах, а также при острых гнойных эндометритах массаж противопоказан.

Кроме того, коровам вводят подкожно 0,5%-ный водный раствор прозерина в дозе 1-3 мл.

Положительные результаты дают подкожные инъекции 5-10%-ного раствора ихтиола в дозе 20-40 мл с промежутком 48 часов, аутогемотерапия (кровь вводят внутримышечно в область ягодицы в количестве 70-80 мл трёхкратно с промежутком 48 часов).

Также вводят внутривенно коровам 10%-ный раствор хлористого кальция или глюконата кальция в дозе 200-250 мл, 1 раз в день, подкожно кофеин в дозе 3-5 грамм, внутримышечно пенициллин (500-600 тыс. ед.) или стрептомицин (до 1 млн. ед. в 5 мл 0,5%-ного раствора новокаина) 2-3 раза в день в течении 4-6 дней.

Схема лечения бронхопневмонии

1 день. 4%-ный раствор гентамицина сульфата 2 мл внутримышечно 2 раза в сутки. Новокаиновая блокада по Шакурову.

2 день. 4%-ный раствор гентамицина сульфата 2 мл внутримышечно 2 раза в сутки. Для улучшения общей резистентности внутривенно вводят 40%-ный раствор глюкозы, а также тривитамин (А, Д, Е) внутримышечно в дозе 3 мл.

3 день. 4%-ный раствор гентамицина сульфата 2 мл внутримышечно 2 раза в сутки. Новокаиновая блокада по Шакурову. Внутримышечно тривитамин (А, Д, Е) масляный раствор 3 мл. Внутривенно глюкозу.

4 день. 4%-ный раствор гентамицина сульфата 2 мл внутримышечно 2 раза в сутки. Внутримышечно тривитамин (А, Д, Е) масляный раствор 3 мл. Внутривенно 40% раствор глюкозы.

5 день. 4%-ный раствор гентамицина сульфата 2 мл внутримышечно. Новокаиновая блокада по Шакурову. Внутривенно глюкозу.

6 день. 4%-ный раствор гентамицина сульфата 2 мл внутримышечно. Внутривенно 40% раствор глюкозы. Внутримышечно тривитамин (А, Д, Е) масляный раствор 3 мл.

7 день. 4%-ный раствор гентамицина сульфата 2 мл внутримышечно. Внутривенно 40% раствор глюкозы. Внутримышечно тривитамин (А, Д, Е) масляный раствор 3 мл.

8 день. 4%-ный раствор гентамицина сульфата 2 мл внутримышечно 2 раза в сутки.

Схема лечения диспепсии

6 – 12-часовая голодная  диета с заменой молозива физиологическим  раствором.

Промывание рубца физиологическим раствором через медицинский желудочный зонд.

После голодной диеты из сосковой поилки дают 500 мл молозива с 200 мл физиологического раствора; в последующие дни количество молозива постепенно доводить до нормы.

Антибиотики:

полимиксин 20 ед./кг + эритромицин 15-20 ед./кг или

полимиксин 20 ед./кг + энтеросептол 2-3 таблетки.

Желудочный сок по 30-50 мл со 100 мл кипячённой воды применять за 20-30 минут до выпойки.

Физиологический раствор внутрь многократно.

Иньецируют цитратную кровь от крупного рогатого скота.

2.2. Материал и методы  исследований

 

Изучение эпизоотологических и клинических особенностей течения болезней конечностей у крупного рогатого скота проводили в ЗАО «Донец» Шебекинского района, Белгородской области.

 

2.2.1. Изучение предрасполагающих  факторов, способствующих распространению  болезней у коров

Эпизоотологические исследования причин возникновения и распространения болезни приведены с целью уточнения наличия в хозяйстве условий для осуществления непрерывности эпизоотологической цепи при некробактериозе и других болезней конечностей.

При этом учитывали всю работу, проводимую как среди поголовья коров, так и по обеспечению санитарного уровня помещений и выгульных дворов. Вначале установили источник инфекции, первые действия зооветспециалистов при появлении заболевания, провели наблюдения за неблагополучным стадом, условия его кормления и содержания. Установили период времени, необходимый для перезаражения всего поголовья.

Такой подход обеспечил выявление сложного комплекса явлений с биологической основой, развивающихся под влиянием природных и хозяйственных факторов.

Результаты наблюдений были учтены по времени появления первых клинических признаков, количеству заболевших животных, бактериоскопии мазков-отпечатков. Для этого один раз в месяц были проведены клинический осмотр всего подопытного поголовья и бактериоскопия мазков-отпечатков, приготовленных из пораженных копытец коров.

На основании анализа влияния и связей этих факторов в различные сезоны года, сравнивая эти факторы с предшествующим годом, были выявлены некоторые закономерности в возникновении и распространении заболевания.

2.2.2. Изучение симптомокомплекса болезней конечностей

Для более детального изучения влияния лекарственных препаратов на возникновения препаратов на возникновение и течение болезней конечностей у коров были проведены наблюдения и исследования при естественном течении инфекции.

Для исследования подошву копытца тщательно вымывали водой. Если же на ней имелся мертвый рог и загрязнения навозом, то этот поверхностный слой расчищали копытным ножом до нормального рога. Отросший рог удален. Из области стенок оставлены выступы по 2–3 см. Межкопытцевую щель, кожу венчика, рог стенки тщательно исследовали визуально и посредством пальпации. Таким способом обнаруживали дефекты эпителия, трещины рога, чувствительные зоны. Особое внимание уделяли исследованию венчика и пяточной части: изменению цвета (покраснение), наличию повреждений, флюктуации. Пяточные части исследовали на наличие эрозий, припухлостей или повышение чувствительности. При обнаружении патологии на одном копытце, исследовали на наличие аналогичных поражений на пяточной части другого копытца.

Плоский, и гладкий и блестящий рог подошвы свидетельствовал о его чрезмерном износе. Подошва в норме вогнута, поэтому нагрузка в основном падает на стенки копытец. При плоской же подошве нагрузка распределяется на всю ее поверхность, что увеличивает риск повреждения инородным телом. Наоборот, вогнутая подошва копытца более защищена от возможных повреждений слоем высохшего и спрессованного под вогнутостью навоза. Следовательно, весной расчистку копытец проводили более тщательно, чем летом, так как за лето копытце отрастает принимает оптимальную форму.

Посредством визуального наблюдения устанавливали следующие признаки и соответствующие им заболевания:

плотное припухание венчика – остит;

болезненное припухание и покраснение кожи венчика – ламинит;

болезненное припухание и ограниченное покраснение кожи венчика – челночный бурсит, артрит копытцевого сустава;

вертикальный дефект рога – трещина рогового футляра;

горизонтальные углубления на роговом футляре – расседина;

изменение контура копытца – деформация копытцевой кости;

потеря блеска венечной каймы – хронический ламинит;

эрозии в области кожи венчика, межкопытцевой щели, пятки – дерматит в области межкопытцевой щели венчика;

разрастание тканей, напоминающее цветную капусту на дорсальной и плантарной поверхностях межкопытцевой щели – веррукозный дерматит (П. Гринаф, Ф. Маккалум, А. Уивер, 1976).

Обнаружение B. necrophorum в мазках – отпечатках, приготовленных с поверхности эрозии и язв свидетельствовало о наличии инфекции.

Если поражение не было обнаружено при явно проявляющейся хромоте, то предпринимали систематическое исследование самой подошвы, начиная с зацепной части и назад. Если нужно удаляли очень тонкий слой шершавого и рыхлого рога. Лежащий глубже рог должен был без дефектов, хромово-белого цвета. Исследования начинали с латерального заднего копытца, так как именно на этот палец приходилось более 70 % поражений. Хронические очаги обычно обнаруживали в зацепной части в виде темных участков с остатками эксудата.

После удаления лишнего рога в зацепной части видны темные очаги воспаления.

При клиническом обследовании обращали внимание на положение дистального отдела конечности. Степень болезненности определяли по величине нагрузки, падающей на дистальный отдел конечности. Сгибание или разгибание, абдукция или аддукция служили показателем стремления животного облегчить нагрузку в определенной части дистального отдела конечности.

Пальпация дистального отдела конечности вызывала болезненную реакцию в пораженных местах, не отмеченных еще какими-либо видимыми изменениями. При этом пальпация венчика давала наилучшие результаты.

 

2.2.3. Бактериоскопическое исследование

Выясняли:

микрофлору открытых повреждений копытец и эффективность некоторых методов лечения и профилактики болезней копытец.

Исследования проводились на ферме ЗАО «Донец», где коров содержали на деревянных полах. Тип кормления в хозяйстве – концентратно-силосный , летом – выпасали на пастбищах. Отечественные и зарубежные ученые (Н.Е. Гришаев, 1969; Y.A. Schmit, Y.Z. Gradin, 1980) показали возможность применения метода бактериоскопии для изучения изменения микрофлоры в пораженном копытце животного. В качестве исследуемого материала использовали гнойно-некротические ткани с поверхности раны очищенного и обрезанного копыта. От каждого животного готовили по 3 мазка – отпечатка до и после лечения.